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免疫組化原理動力、流程及結(jié)果分析。
更新時間:2019-04-23   點擊次數(shù):6604次

免疫組化原理

     免疫組化染色是用一抗與被檢測組織中目的蛋白抗原結(jié)合互動式宣講,然后用HRP等標記的二抗與一抗進行結(jié)合效高性,后通過與DAB顯色劑反應(yīng),進而確認所要檢測蛋白抗原的定位自動化、半定量等目的提升。

?     免疫化更多的意義在于查看目的蛋白的定位定量一般用western來實現(xiàn)不折不扣。

     免疫組化染色和HE染色的不同之處可能HE染色比較粗略地辨認不同細胞形態(tài)學(xué)改變支撐能力;而后者能夠針對特異性細胞標志物來檢測特異性細胞的改變(數(shù)量)、也可檢測細胞內(nèi)細胞因子的轉(zhuǎn)位高效利用,組織中一些特異性蛋白的表達的量改變(通過圖像分析系統(tǒng)分析顏色深淺特征更加明顯、分布的面積等綜合分析)

?     通俗的講講理論,HE僅僅是看大體病理改變數字技術,比如組織壞死,比如炎性滲出市場開拓。免疫組化措施,看你的目的蛋白的表達情況

免疫組HE染色對比

     DABHE一樣也是一種染色劑新模式,HE染色相對簡單實現,能分辨出細胞中的嗜酸嗜堿性物質(zhì);DAB染色全稱應(yīng)該叫做免疫化DAB染色組織了,經(jīng)過一系列復(fù)雜的生化反應(yīng)后服務體系,DAB(二氨基聯(lián)苯胺)染色劑能將辣根過氧化物酶染成棕色。

常用的免疫組化染色方法

      組化用HRP的話搶抓機遇,信號不夠強分析。通常用生物素標記HRP來增強信號表示。

   ABC法(卵白素-生物素-過氧化物酶復(fù)合物法)

?     ABC法是利用卵白素與生物素*的高度親和力特性,與生物素化二抗結(jié)合非常激烈,形成抗原+特異性抗體+生物素化二抗+卵白素+生物素+HRP復(fù)合物競爭力所在,后DAB顯色。

?     復(fù)合物配制:先將生物素與酶結(jié)合領域,形成生物素化HRP溝通機製,以生物素化HRP與卵白素按一定比例混合,形成卵白素-生物素-過氧化物酶復(fù)合物註入新的動力。

   SP法(抗生物素蛋白鏈酶素-過氧化物酶復(fù)合物)

?     本身沒有連接生物素領先水平,但有兩個生物素親和力*的結(jié)合位點,可以與二抗上的生物素結(jié)合雙重提升,敏感性高戰略布局,復(fù)合物不需要使用前混合,更為簡便表現明顯更佳。

   PAP法

   直接法

樣本制備

 

 

 

免疫組化結(jié)果分析

    免疫組化結(jié)果的判斷原則:

?    必須設(shè)陽性對照和陰性對照讓人糾結。

?    抗原表達必須在特定部位。

?    陰性結(jié)果不能視為抗原不表達穩定發展。

免疫組化染色實驗組與對照組結(jié)果分析表 

    從表可以看出只有6基石之一、7實驗結(jié)果有意義。1-5均因?qū)φ战M的結(jié)果已否定Ab的特異性或IHC技術(shù)操作存在錯誤等而使實驗結(jié)果失去意義增持能力,必須重復(fù)實驗或換用Ab共同努力。

染色失敗的幾種情況及原因

  染色失敗的幾種情況。

?     所染的全部切片均為陰性結(jié)果追求卓越,包括陽性對照在內(nèi)逐漸完善。

?     所有切片均呈陽性反應(yīng)。

?     所有切片背景過深合理需求。

?     陽性對照染色良好廣泛關註,檢測的陽性標本呈陰性反應(yīng)。

所有切片呈陽性反應(yīng)發力,其原因:

?     切片在染色過程中抗體過濃優勢領先,或干片了。

?     緩沖液配置中未加氯化納和PH值不準確共創美好, 洗滌不*推動並實現。

?     使用已變色的呈色底物溶液,或呈色反 應(yīng)時間過長覆蓋範圍。

?     抗體溫育的時間過長優化程度。

?     H2O2濃度過高,呈色速度過快且粘附劑太厚奮勇向前。

所有切片背景過深不斷豐富,其原因:

?     內(nèi)源性過氧化酶沒有*阻斷實施體系。

?     切片或涂片過厚。

?     漂洗不夠各有優勢。

?     底物呈色反應(yīng)過久效果較好。

?     蛋白質(zhì)封閉不夠或所用血清溶血。

?     使用全血清抗體稀釋不夠快速增長。

陽性對照染色良好,檢測的陽性標本呈陰性反應(yīng)占。

?     常見的原因:

     標本固定和處理不當高質量。

注意事項

?     蘇木素復(fù)染時間需要摸索,尤其要考慮陽性染色的位置激發創作。

?     切片脫蠟和水化要充分前景;加反應(yīng)液時要覆蓋組織充分;每次加液前甩干洗滌液增幅最大,但又防止干片共享應用。

?以下原因可能導(dǎo)致片子著色不均勻:

     ①脫蠟不充分藴??梢?/span>60℃20min示範推廣,立即放入新鮮的二甲苯中。

     ②水化不全即將展開。應(yīng)經(jīng)常配制新鮮的梯度乙醇大幅增加。

     ③抗體沒混勻。用移液器充分混勻一抗/二抗等試劑傳承。抗體孵育時進展情況,切片放傾斜。

     ⑤抗體孵育后PBS沖洗不充分綠色化發展。

     ⑥制片厚薄不均勻等問題至關重要。

     ⑦染片盒不平,切片傾斜用上了。

?一抗的清洗:

     單獨沖洗提升行動,防止交叉反應(yīng)造成污染。

     溫柔沖洗關註,防止切片的脫落自然條件,推薦用浸洗方式。

     沖洗的時間要足夠開展,才能*洗去 結(jié)合的物質(zhì)互動互補。

?PBS的PH和離子強度的使用。

     建議PH在7.4-7.6濃度是0.01 M意向。

     中性及弱鹼性條件(PH7-8)有利 于免疫復(fù)合物的形成意料之外,而酸性條件則有利于分解文化價值;低離子強度有利于免疫復(fù)合物的形成,而高離子強度則有利 于分解置之不顧。

?拍照

     有條件的話應(yīng)該立即拍照不斷完善,若不能及時拍照,也要封好片和用指甲油封固方便,保持避光和濕度基礎上。

 

 

 

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